1. Принципы санитарно-микробиологического исследования




Скачать 398.93 Kb.
Название1. Принципы санитарно-микробиологического исследования
страница2/3
Дата публикации25.07.2013
Размер398.93 Kb.
ТипРеферат
zadocs.ru > Биология > Реферат
1   2   3

^ Бактериологические исследования оборудования, спец. одежды, рук, воды и воздуха, периодичность контроля.

(Смотр. приложение №8)

Санитарно-микробиологическое исследование объекта на присутствие патогенных микроорганизмов проводится работниками СЭС в плановом порядке, а также внепланово - по эпидемическим показаниям.

^ 4.Особенности проведения исследований.

Прямое выявление в пищевых продуктах патогенных или условно-патогенных микробов и их ядов проводится в соответствии с существующими нормативными документами.

Для определения патогенных микроорганизмов могут быть использованы следующие методы:

  • прямой посев исследуемого материала в питательные среды;

  • предварительная концентрация патогенных микроорганизмов пропусканием исследуемого объекта (жидкой консистенции) через мембранные фильтры или посевом в среды накопления;

  • обнаружение патогенных микроорганизмов методом заражения чувствительных животных (биопроба);

  • применение ускоренных методов: серологических, люминесцентно-серологических и радиоизотопного.


^ ИССЛЕДОВАНИЯ РЫБНОГО СЫРЬЯ.

1 Визуальный контроль рыбного сырья

Ход определения

Визуально отметить доброкачественность рыбного сырья. Обследование замороженного сырья проводят после его дефростации. У доброкачественной рыбы глаза прозрачные, чешуя блестящая, плотно удерживается на коже. Жабры красные, без запаха и слизи. Брюшко не вздутое. Мясо на ощупь плотное, упругое, от костей отделяется с трудом.

2 Определение качества рыбы методом мазков-отпечатков

Ход определения

Кожу рыбы посередине спины или ближе к голове освободить от чешуи и прожечь раскаленным скальпелем. Стерильным скальпелем вырезать кучек мяса рыбы площадью около 1,5 см2 и толщиной 1,5-2 мм. Этим кусочком мяса сделать отпечаток на предварительно обезжиренном предметном стекле.

Отпечаток высушить на воздухе и зафиксировать в пламени спиртовки Зафиксированный мазок окрасить метиленовым синим Лёффлера. Мазок микроскопировать с иммерсией. Просмотреть под микроскопом не менее 10 полей зрения.

Для сравнения аналогично изготовить и микроскопировать мазок с поверхности рыбы.

В поле зрения микроскопа в мазках-отпечатках с тканей свежевыловленной рыбы микроорганизмы должны отсутствовать. В мазках задержанной, но пригодной к использованию рыбы могут содержаться единичные микроорганизмы, но не более 10 клеток микрококков и диплококков. Мазки-отпечатки с поверхности рыбы: в поле зрения микроскопа обнаруживаются единичные микрококки и диплококки – сырье доброкачественное; от 10 до 30 микро- и диплококков - сырье задержанное, но пригодное в пищу; более 30 клеток, (в том числе большое количество спороносных бактерий) – сырье непригодное к употреблению.

3 Определение количества МАФАНМ

Сущность метода количественного определения МАФАнМ заключается в глубинном посеве разведений навески исследуемого материала в питательный агар, инкубировании посевов при температуре (30±1)0С в течение (72±3) ч в аэробных условиях и последующим подсчетом всех видимых выросших колоний.

Ход определения

Разлить в стерильные пробирки по 9 см3, флаконы - по 90 см3 стерильного физраствора. В предварительно профламбированную фарфоровую чашечку отвесить профламбированным шпателем 10 г пробы. Внести навеску рыбы во флакон с 90 см3 физраствора, перемешать и дать отстояться в течение 5 мин. Надосадочную жидкость использовать для приготовления 2, 3, 4 и 5 десятикратных разведений исследуемой пробы. По 1 см3 из 4-го и 5-го разведений высеять в две параллельные предварительно промаркированные стерильные чашки Петри (посев начинать с большего разведения, что позволит использовать одну стерильную пипетку). Внести расплавленный и остуженный до 400С РПА в чашки Петри с посевами. После застывания агара в чашках посевы поместить в термостат при температуре 300С на 72 ч. После окончания времени инкубирования произвести учет колоний в чашках с посевами.

4 Определение бактерий группы кишечных палочек

Сущность метода заключается в посеве определенного количества разведений исследуемого материала в жидкую элективную среду с лактозой, инкубации посевов при температуре (36±1)0С в течение (24±3) ч, подсчете положительных проб по ферментации лактозы с образованием кислоты и газа, пересеве культуральной жидкости на поверхность плотной селективно-диагностической среды Эндо для подтверждения принадлежности выделенных колоний к колиформным бактериям

Ход определения

Использовать приготовленные разведения предыдущего определения. Разлить в стерильные пробирки по 4-5 см3 и во флаконы по 40-50 см3 среды Кода. Из имеющихся разведений делают посевы по 1 см3 в предварительно промаркированные пробирки со средой Кода. Для посева 1 г материала вносят во флакон со среды Кода 10 см3 исходного (первого) разведения. Посевы поместить в термостат при температуре 370С на 18-24 ч.

По окончании времени инкубирования отметить наличие роста в посевах (кислота и газ, только кислота или только газ). Из пробирок с наличием роста сделать посевы штрихом на среду Эндо. Посевы поместить в термостат при температуре 370С на 24 ч. По окончании времени инкубирования отметить характер роста колоний на среде Эндо, определить оксидазную активность.

Определение оксидазной активности. На предметное стекло помещают фильтровальную бумагу, смачивают ее реактивом для определения оксидазной активности. Затем бактериологической петлей снимают изолированные колонии, выросшие на среде Эндо, и наносят их в виде штриха на поверхность смоченной бумаги. Если в течение 1 мин не появляется синее окрашивание, то бактерии оксидазной активностью не обладают. Приготовить мазок, высушить его и зафиксировать. Затем окрасить его по Граму в модификации Хукера, микроскопировать с иммерсией.

Окраска мазков по Граму в модификации Хукера. На мазок помещают полоску фильтровальной бумаги и наносят несколько капель раствора Хукера, через 0,5-1,0 мин снимают фильтровальную бумагу, промывают дистиллированной водой и наносят на мазок йодный раствор Бурке. Через 0,5-1,0 мин раствор с мазка сливают, промывают 96%-ным этанолом, а затем дистиллированной водой. На промытый мазок наносят контрастный красящий раствор (раствор фуксина), выдерживают 2-3 мин, промывают водой, промокают фильтровальной бумагой.

Определение грамотрицательных бактерий экспресс-методом. На предметное стекло наносят 1-2 капли 3%-ного раствора гидроксида калия, затем вносят колонию, снятую петлей с поверхности плотной питательной среды, тщательно перемешивают, затем петлю медленно приподнимать над каплей. Грамположительные бактерии тянутся за петлей на 0,5-2 см, грамположительные – за петлей не тянутся.

5 Определение стафилококков

Метод определения стафилококков основывается на выявлении характерного роста этих бактерий на селективно-диагностических средах, определении морфологии клеток, способности продуцировать лецитиназу и коагулировать цитратную плазму крови кролика под влиянием фермента коагулазы.

Ход определения

Использовать приготовленные разведения предыдущих определений. Разлить среду накопления (солевой бульон) в пробирки по 6-7 см3, во флаконы – по 60-70см3. В пробирки высеять по 1 см3 1-го, 2-го и 3-го разведений сырья, во флакон – 10 см3 первого разведения (соответствует 1 г). Посевы поместить в термостат при температуре 370С на 48 ч. По окончании времени инкубирования из пробирок и флаконов с наличием роста (помутнение среды) пересеять материал штриховым методом на поверхность среды ЖСА. Посевы инкубировать при температуре 370С в течение 24-48 ч. Отметить наличие роста колоний на среде ЖСА и охарактеризовать их. Сделать пересев характерных колоний на скошенный питательный агар. Посевы инкубировать при температуре 370С в течение 24 ч. С колоний, выросших на скошенном агаре, изготовить мазки, окрасить их по Граму, микроскопировать с иммерсией. Наблюдаемую микроскопическую картины зарисовать и описать, отметив увеличение микроскопа.

6 Определение количества плесневых грибов и дрожжей

Сущность метода заключается в способности осмотолерантных плесневых грибов и дрожжей расти в селективных средах в аэробных условиях при температуре 250С.

Ход определения

Использовать приготовленные разведения предыдущего определения. По 1 см3 1-го и 2-го разведений высеять в две параллельные чашки Петри. Не позднее 15 мин в чашки внести среду Сабуро высотой слоя 4-5 мм, равномерно перемешать круговыми движениями чашки. После застывания среды чашки поместить в термостат при температуре 250С на 5 суток. Произвести подсчет колоний отдельно для плесневых грибов и дрожжей. Колонии плесневых грибов и дрожжей рассмотреть под микроскопом в живом виде в препарате "раздавленная капля". Наблюдаемую картину зарисовать и описать, отметив увеличение микроскопа.

7 Определение наличия сульфитредуцирующих клостридий

Метод определения сульфитредуцирующих клостридий базируется на их способности вызывать почернение железосульфитной среды Вильсона-Блера в результате восстановления сернистокислого натрия с образованием сернистого железа.

Ход определения

Использовать приготовленные разведения предыдущих определений. Приготовить среду Вильсона-Блера (расплавить на водяной бане и охладить до температуры 40-450С РПА с 1% глюкозы и снести в нее недостающие ингредиенты). Внести по 1 см3 1-го и 2-го разведений продукта в стерильные пробирки. Для посева 1 г продукта внести 10 см3 1-го разведения в стерильную большую пробирку. Все пробирки предварительно промаркировать. В пробирки внести высоким столбиком среду Вильсона-Блера. Посевы поместить в термостат при температуре 370С. Посевы инкубировать не более 72 ч, ежедневно просматривать, отмечая появление черных или коричневых колоний или потемнения среды. Из материала пробирок с наличием роста изготовить мазки, окрасить их по Граму, микроскопировать с иммерсией.

Определение наличие бактериальных спор в исследуемом материале. Необходимо изготовить мазок из колоний на среде Вильсона-Блера, нанести на него 5%-ный раствор малахитового зеленого и нагреть в пламени спиртовки в течение 1 мин до появления паров, затем мазок охладить, промыть водой, нанести 0,5%-ный спиртовой раствор основного фуксина на 30 с, снова промыть водой. Мазок микроскопировать с иммерсией, учитывая, что бактериальные споры приобретают зеленую окраску, вегетативные клетки - красную.

8 Определение наличия протеев

Сущность метода базируется на способности бактерий рода Proteus при посеве определенного количества продукта в конденсационную воду свежескошенного питательного агара давать ползучий рост раньше других видов бактерий.

Ход определения

Использовать приготовленные разведения предыдущих определений. Разлить РПБ в пробирки по 5-7 см3, во флаконы – по 50 см3. В пробирки высеять по 1 см3 1-го и 2-го разведений продукции, во флакон – 10 см3 первого разведения (соответствует 1 г). Посевы поместить в термостат при температуре 370С на 24 ч. Приготовить скошенный питательный агар. Из пробирок с наличием роста внести по две капли в конденсационную воду скошенного РПА (при внесении капель не касаться поверхности среды и стенок пробирки). Засеянные пробирки в вертикальном положении поместить в термостат при температуре 370С на 24 ч. После инкубирования посевов отметить наличие в пробирках ползучего роста бактерий и гнилостного запаха. Из колоний, характерных для бактерий рода Proteus, изготовить мазки, окрасить по Граму и микроскопировать с иммерсией. Наблюдаемую картину зарисовать и описать, отметив увеличение микроскопа. Суточную культуру со скошенного агара пересеять штрихом на поверхность скошенного в пробирке фенилаланинового агара. Посевы поместить в термостат при температуре 370С на 24 ч. После термостатирования посевов на поверхность выросшей на скошенном агаре колонии нанести 3-5 капель раствора хлорного железа. Появление интенсивного зеленого окрашивания свидетельствует о дезаминировании фенилаланина, что характерно для бактерий рода Proteus.

9 Определение бактерий рода сальмонелл

Метод основан на способности бактерий рода сальмонелл на дифференциально-диагностических средах образовывать специфические колонии и давать реакцию агглютинации с сальмонеллезными сыворотками.

К бактериям рода сальмонелл относятся грамотрицательные палочки с закругленными концами, длина варьирует от 1 до 3 мк, ширина от 0,5 до 0,6 мк. Сальмонеллы являются факультативными анаэробами. Оптимальная температура роста 37 град. C, реакция среды слабощелочная (pH 7,2 - 7,4). Сальмонеллы подвижны.

Ход определения

Навеску продукта в количестве 25 г засевают в 100 куб. см среды обогащения (магниевую или селенитовый бульон).

Посевы помещают на 18 - 20 ч в термостат при температуре 37 град C.

На второй день из сред обогащения делают высев в чашки Петри на плотные дифференциально-диагностические среды: Висмут-сульфит агар (BCA), среду Плоскирева, Левина или Эндо. Перед посевом среду необходимо подсушить в термостате. Чашки термостатируют при температуре 37 град. C в течение 15 - 18 ч со средами Эндо и Плоскирева и 48 ч со средой BCA.

На BCA сальмонеллы образуют черные (или коричневые) с металлическим блеском колонии, цвет среды под колониями черный. Исключение составляют S. paratyphi, S. cholerae suis и ряд других, растущих в виде мелких серовато-зеленых колоний с черным центром и без него. Кишечная палочка образует бесцветные, зеленоватые или серые колонии или не дает роста.

На среде Эндо колонии сальмонеллы бесцветные, слабо-розовые, выпуклые, блестящие. На средах Плоскирева и Левина колонии прозрачные, голубоватые, бледные или нежно-розовые.

С дифференциально-диагностических сред отсевают несколько колоний на трехсахарный агар с мочевиной или среду Клиглера с мочевиной. Посевы делают сначала штрихом по скошенной поверхности, а затем уколом (два раза) в глубину столбика. Посевы выдерживают в термостате при температуре 37 град. C 24 ч. Учитывают способность культуры ферментировать глюкозу, лактозу и мочевину. Для сальмонелл характерно разложение глюкозы с образованием газа. Лактозу и мочевину не разлагают. Готовая среда - трехсахарный агар с мочевиной имеет розовато-малиновый цвет. Отсутствие изменения цвета скошенной поверхности указывает на то, что лактоза и сахароза не разлагаются исследуемой культурой. Желтое окрашивание столбика, образование газа (разрывы) и сероводорода (почернение) указывает на рост бактерий из рода сальмонелл.

Желательно со среды Клиглера или с трехсахарного агара отсевать на короткий пестрый ряд, включающий скошенный агар, и среды Гисса с лактозой, глюкозой, маннитом, сахарозой, мальтозой, рыбо- или мясопептонным бульоном для определения индола и сероводорода. Под пробку с бульоном помещают бумажки, смоченные уксуснокислым свинцом для определения сероводорода и раствором щавелевой кислоты для определения образования индола. Посевы термостатируют при температуре 37 град. C в течение 24 ч.

Таким образом, к сальмонеллам относятся бактерии, не разлагавшие лактозу, сахарозу и мочевину, ферментирующие глюкозу, маннит и мальтозу с образованием газа, продуцирующие сероводород и не образующие индол. Для окончательного заключения у выделенных культур должны быть изучены серологические свойства.

Сальмонеллы обладают двумя основными антигенными комплексами. Различают жгутиковые (H) антигены и соматические (O). Антигенная структура сальмонелл расшифровывается с помощью монорецепторных H- и O-сывороток.

Серологические свойства изучают путем постановки реакции агглютинации на стекле односуточной культуры, выделенной с трехсахарного агара, с поливалентной агглютинирующей адсорбированной сальмонеллезной O-сывороткой. При получении положительной реакции на стекле с этой сывороткой проводят идентификацию с помощью монорецепторных агглютинирующих адсорбированных O-сывороток. При помощи поливалентной сальмонеллезной O-сыворотки устанавливается принадлежность исследуемой культуры к одной из серологических групп сальмонелл. Для определения серологического типа культур используют H-монорецепторные сыворотки первой и второй фаз.

Для реакции агглютинации с O-сыворотками берут односуточную культуру с верхней части, с H-сыворотками - с нижней части скошенного питательного агара.

В случае положительной реакции агглютинации с монорецепторными O-, H-сыворотками делают окончательный вывод о присутствии в исследуемом образце сальмонелл.
^ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ КОНСЕРВНОГО ПРОИЗВОДСТВА.

1 Контроль консервов после стерилизации

Консервы после стерилизации контролируют с целью установления промышленной стерильности. Метод определения промышленной стерильности основан на определении внешнего вида и герметичности консервов, выявления в продукте жизнеспособных мезофильных аэробных, факультативно-анаэробных и анаэробных микроорганизмов.

Сущность метода определения жизнеспособных микроорганизмов основан на установлении отсутствия жизнеспособных МАФАнМ и мезофильных анаэробных микроорганизмов путем культивирования посевов в питательных средах.

Ход определения

Консервы осмотреть, подвергнуть санитарной обработке, определить герметичность. Консервы термостатировать при температуре 300С в течение 5 суток, затем выдержать одни сутки при комнатной температуре. Подготовить рабочее место. Вскрыть консервную банку с соблюдением правил стерильности. Для выявления жизнеспособных МАФАнМ в каждую из двух пробирок, содержащих 5-6 см3 питательной среды с 1% глюкозы, внести по 1см3 (или 1 г) консервированного продукта. Для выявления жизнеспособности мезофильных анаэробных микроорганизмов на дно каждой из двух пробирок с регенерированной средой Китт-Тароцци с высотой столбика 10-11 см внести по 1 см3 (или 1 г) исследуемого продукта. Сразу после посева на поверхность жидкой среды Китт-Тароцци наслоить стерильное вазелиновое масло высотой столбика. Все посевы термостатировать при температуре 300С до появления видимых признаков роста, но не менее 5 суток.

При отсутствии роста в посевах сделать вывод о промышленной стерильности исследуемых консервов. При наличии роста в посевах изготовить мазки, окрасить их по Граму, микроскопировать с иммерсией. По результатам микроскопирования сделать заключение о несоответствии консервов требованиям промышленной стерильности или о необходимости проведения дальнейших исследований для идентификации культур бацилл и клостридий и их количественного определения в консервах.

2 Определение наличия спор мезофильных клостридий

Сущность метода определения спор мезофильных клостридий заключается в посеве определенного количества исследуемого материала в регенерированную среду Китт-Тароцци, прогревании его при температуре 800С в течение 20 мин, культивировании посевов при температуре 300С в течение 5 суток и регистрации видимых признаков роста мезофильных анаэробных микроорганизмов.

Ход определения

Приготовить десятикратные разведения исследуемых вспомогательных материалов. Регенерировать среду Китт-Тароцци. Для этого пробирки со средой прогреть в кипящей водяной бане в течение 20 мин, а затем охладить в струе холодной воды до температуры 400С (среду, приготовленную накануне исследования, можно не регенерировать). В предварительно промаркированные пробирки с регенерированной средой Китт-Тароцци внести по 1 см3 1-го или 2-го приготовленного разведения (в зависимости от исследуемого материала). Засеянные пробирки прогреть на водяной бане при 800С в течение 20 мин, а затем охладить под струей холодной воды до 35-400С. После охлаждения в пробирки внести стерильное вазелиновое масло. Посевы инкубировать при температуре 300С в течение 5 суток, ежедневно наблюдая за появлением признаков роста микроорганизмов (помутнение среды, образование газа). В пробирках с наличием роста определить каталазу (см. работу .№1). Из пробирок с наличием роста и негативной пробой на каталазу внести по 0,1 см3 культуральной жидкости в стерильные пробирки. Посевы залить расплавленным и охлажденным до 400С питательным агаром с 1% глюкозы столбиком высотой 10-11 см. После термостатирования пробирок при температуре 300С в течение 24-48 ч отметить наличие характерного роста (в глубине столбика с образованием газа или разрыва среды).

3 Определение наличия спор термофильных клостридий

Сущность метода определения спор термофильных клостридий основывается на посеве определенного колич6ства исследуемого материала, прогретого при температуре 950С в течение 20 мин, в регенерированную среду Китт-Тароцци, культивировании посевов при температуре 55-620С оС в течение 72 ч, регистрации видимых признаков роста микроорганизмов и их идентификации.

Ход определения

В пробирки с регенерированной средой Китт-Тароцци высеять то количество пробы, в котором нормируется отсутствие спор термофильных клостридий (например, 1 см3 приготовленного разведения в обычную пробирку со средой при исследовании пряностей или 5 см3 разведения в большую пробирку со средой при исследовании муки, крупы, соли, и др.). Пробирки с посевами прогреть на водяной бане при 950С в течение 20 мин. При прогревании посевов в водяную баню помещается контрольная пробирка, в которую вносится количество жидкости равное количеству среды в посевах. В контрольную пробирку помещается термометр. Водяная баня перед помещением пробирок должна быть прогрета до температуры около 500С. Отсчет времени прогревания следует начинать с момента достижения в контрольной пробирке температуры 950С. Во время прогревания не допускать колебания температуры. По истечении требуемого времени прогревания пробирки с посевами охладить под струей водопроводной воды до температуры 55-620С. В пробирки с посевами внести стерильное вазелиновое масло. Посевы термостатировать при температуре 55-620С в течение 72 ч. Ежедневно наблюдая за появление признаков роста микроорганизмов (помутнение среды, образование газа). В пробирках с наличием роста определить каталазу. Из пробирок с наличием роста высеять по 0,5 см3 культуральной жидкости в стерильные пробирки. Посевы залить расплавленным и охлажденным до 400С уплотненным питательным агаром с 1% глюкозы столбиком высотой 10-11 см. Посевы термостатируют при 55-620С в течение 72 ч. Отметить наличие роста в пробирках (анаэробные микроорганизмы растут в высоком столбике среды на расстоянии 2-3 см от поверхности)

4 Определение наличия спор ТАФАнМ

Метод определения спор термофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов базируется на посеве определенного количества продукта, прогретого при температуре (95±1)оС на протяжении 20 мин, в картофельно-пептонный бульон, культивировании посевов при температуре 55-62оС в течение 72 ч, регистрации видимых признаков роста микроорганизмов и их идентификации.

Ход определения

В пробирки с картофельно-пептонным бульоном высеять то количество пробы, в котором нормируется отсутствие спор ТАФАнМ. Пробирки с посевами прогреть на водяной бане при 950С в течение 20 мин. Посевы термостатировать при температуре 55-620С в течение 72 ч. Ежедневно наблюдая за появление признаков роста микроорганизмов (помутнение среды, образование газа). Из материала пробирок с наличием роста изготовить мазки, окрасить их по Граму, микроскопировать с иммерсией. Определить кислотообразующую способность термофильных микроорганизмов. Для этогок исследуемой культуре в пробирке добавить каплю 0,04%-ного раствора бромкрезолового пурпурного. Отметить изменение окраски (при положительном результате происходит изменение сине-фиолетовой окраски на желтую).
1   2   3

Похожие:

1. Принципы санитарно-микробиологического исследования iconУчебное пособие предназначено для студентов и будущих медицинских...
К технике сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологическую лабораторию, к проведению микробиологических и иммунологических...

1. Принципы санитарно-микробиологического исследования iconПостановление от 9 декабря 2010 г. N 163 об утверждении санпин 1...
Положения о государственной санитарно-эпидемиологической службе Российской Федерации и Положения о государственном санитарно-эпидемиологическом...

1. Принципы санитарно-микробиологического исследования iconДополнение и изменение №2 к области аккредитации испытательного лабораторного...
Система аккредитации лабораторий, осуществляющих санитарно-эпидемиологические исследования, испытания

1. Принципы санитарно-микробиологического исследования iconДополнение и изменение №3 к области аккредитации испытательного лабораторного...
Система аккредитации лабораторий, осуществляющих санитарно-эпидемиологические исследования, испытания

1. Принципы санитарно-микробиологического исследования iconПостановление от 28 января 2008 г n 4 Об утверждении санитарно-эпидемиологических...
Об утверждении Положения о государственной санитарно-эпидемиологической службе Российской Федерации и Положения о государственном...

1. Принципы санитарно-микробиологического исследования iconТема : «Санитарно-гигиенические исследования почвы и ее оценка»
Изучение методов отбора проб почвы, определения механического состава, исследование физических и биологических свойств почвы

1. Принципы санитарно-микробиологического исследования iconОтчет о результатах исследования потребительских предпочтений в отношении...
Общая характеристика исследования (объект исследования, обоснование выборки, методы исследования)

1. Принципы санитарно-микробиологического исследования iconФедеральный закон о санитарно-эпидемиологическом благополучии населения
Российской Федерации в области обеспечения санитарно-эпидемиологического благополучия населения

1. Принципы санитарно-микробиологического исследования iconСанитарно-эпидемиологические правила и нормативы СанПиН 4 1204-03
Санитарно-эпидемиологические требования к устройству, содержанию и организации режима работы загородных стационарных учреждений отдыха...

1. Принципы санитарно-микробиологического исследования icon8. организация санитарно- противоэпидемического обеспечения в чрезвычайных ситуациях
Единая государственная система предупреждения и ликвидации чрезвычайных ситуаций (рсчс) включает функциональную подсистему надзора...

Вы можете разместить ссылку на наш сайт:
Школьные материалы


При копировании материала укажите ссылку © 2013
контакты
zadocs.ru
Главная страница

Разработка сайта — Веб студия Адаманов